FL6000-osDupla modulációs klorofil fluorescencia mérő

FL6000-osA kettős modulációs klorofil fluorescátor az FL3500 kettős modulációs klorofil fluorescátor legújabb frissített verziója, amely kifejezetten egy erős kutatási eszköz a mikroalgák, klorofilok vagy kisztikus szuszpenziók, például kék-zöld algák fotoszintézis mechanizmusainak mélyreható tanulmányozásához. A műszer kétcsatornás mérési vezérléssel rendelkezik, amely szabályozza a minta hőmérsékletét, és egyoldalú fénnyel (STF) van felszerelve, és számos felhasználó által módosítható mérési eljárással rendelkezik, amely a klorofil fluoreszencia különböző mélyreható mechanizmusainak jelenlegi nemzetközi tanulmányait végezheti. A fő felépítése egy optikai mérőfej, amely egy szuszpenziós szabványos minta csésze, 3 beépített LED fényforrás és 1 1 MHz/16 bites AD átalakított PIN dióda jelérzékelő. Az AD konverzió nyeresége és a kredit ideje a szoftver segítségével ellenőrizhető. A detektor akár 4 µs-os felbontással is mérheti a klorofil fluorescenciáját (a gyors változat 1 µs).

Alkalmazási területek:

·Növény fotoszintézis tulajdonságai és metabolikus zavarok szűrése

·Biológiai és nem biológiai kényszerzés vizsgálata

·A növények erőszakellenállásának vagy érzékenységének tanulmányozása

·Metabolikus káosz kutatása

·Fotoszintézis rendszerek működési mechanizmusának tanulmányozása

·A kényszerített növényi fotofiziológiai válaszstratégiák tanulmányozása

Tipikus minták:

·Kék algák (kék baktériumok)

·Zöld algák

·Klorozöld szuszpenzió

·Kisztikus szuszpenzió

·Növény töredékek

Funkciók:

·A beépített klorofil fluorescencia indukciós mérés, a PAM (impulzusmoduláció) mérés, az OJIP gyors fluorescencia dinamika mérés, a QA - re-oxidációs dinamika, az S állapot átalakítása, a klorofil fluorescencia leállítása és egyéb mérési eljárások a világ legismertebb funkciójú klorofil fluorescencia-mérője.

·Kétféle modulációs technológia, kétféle modulációs fény, modulációs fotokémiai fény és folyamatos fotokémiai fény, STF (Single Circulation Flash), TTF (Double Circulation Flash) és MTF (Multi Circulation Flash) és testreszabott FRR (Fast Repetition Rate) mérések

·Standard verzió időfelbontás 4 µs, gyors verzióAkár 1 µs-ig a legmagasabb időfelbontású klorofil fluorescáns

·A vezérlőegység kétcsatornás, csatlakoztatható hőmérséklet-érzékelő hőmérséklet-vezérléshez, csatlakoztatható oxigénmérő egység Hill reakció méréséhez stb.

·Nagyon érzékeny, a minimális vizsgálati határ 100 ng Chla/L

·Fény mérése, fénymérés, telített monoreflex fényforrás színe és intenzitása testreszabható

·A konzol színes érintőképernyővel rendelkezik, amely valós időben megtekintheti a fluorescáló görbéket

Műszaki paraméterek:

·Kísérleti eljárás: Kautsky klorofil fluorescencia indukciós hatás mérése; PAM (impulzusmoduláció)Fluorescent leállítási dinamikamérés; OJIP gyors fluorescencia dinamikai mérés; QA – Reoxidációs dinamika; S állapotátalakítás; Gyors klorofil fluorescencia indukció

• Fluorescenciaparaméterek:

uPAMFluorescent leállítási dinamika mérése: fluorescens leállítási dinamika görbe mérése, F kiszámítható₀Fm, Fv, F₀’,Fm’,Fv’,QY(II),NPQ,ΦPSII,Fv/Fm,Fv’/Fm’,Rfd,qN,qP,ETRTöbb mint 50 klorofil fluorescencia paraméter;

uOJIPGyors fluorescencia-dinamikai mérés: OJIP gyors fluorescencia-dinamikai görbe mérése, F kiszámítható₀FJ, Fi, Fm, Fv, VJ, Vi, Fm / F₀FV / F₀Fv / Fm, M0, Terület, Fix Area, SM, SS, N, Phi_P₀pszi_₀a Phi_E₀A Phi_D₀Phi_Pav, ABS/RC és TR₀/ RCés ET₀/ RCés DI₀/ RCtöbb mint 20 paraméter;

uminőségiQA-reoxidációs kinetika: A QA-reoxidációs kinetika görbe mérése a gyors, középső és lassú fázisok amplitúrájának (A1, A2, A3) és időkonstansájának (T1, T2, T3) megfelelően a QA-reoxidációs folyamat során.

uSS-állapotú teszt: az S-állapotú teszt fluorescencia-hanyatási görbéjének mérése az inaktív fényrendszer II (PSII) kiszámításához_XReakciós központok száma

uFlash fluorescencia indukció (FFL, csak gyors verzió): az antenna hatékony területének, az antenna csatlakozásának stb. alkalmas kiszámításához

uFelhasználói testreszabott protokoll funkciókat biztosít a PSII antennák heterogenitásáhozαA PSIIbétaElemzés, PSII hatékony antenna vágottság (sPSII-esParaméterek mérése (opcionális testreszabási funkció)

uminőségi– Reoxidációs dinamikai görbe ésS-állapotú vizsgálatFluorescenciahanyatási görbe (Li-t，2010）

·Időfelbontás (mintavételi frekvencia): Nagy érzékenységű érzékelő, 4 µs szabványos időfelbontás, 1 µs gyors verzió

·Minimális vizsgálati határ: Standard verzió 100ng Chla / L, gyors verzió 1μg Chla / L

·Vezérlőegység: színes érintőképernyővel, amely valós időben megtekintheti a fluorescáló görbéket

·Mérési szoba:

vagyFényvillanás mérése: 623 nm piros narancssárga és 460 nm kék fény, villanási idő 2–5 µs

vagyEgykörű telített fényvillanás: Maximális fényerősség 170000 µmol (fotonok) / m².s, villanási idő 20–50 µs

vagyFolyamatos fotokémiai fény: Maximális fényerősség 3500 µmol (fotonok)/m².s

vagyFluorescent érzékelő: PIN fotodióda

oADÁtváltó: 16 bit

vagyMinta tesztcső: alapterület 10 x 10 mm, térfogat 4 ml

• Testreszabott mérőszoba (opcionális): Fény, telített fény és fotokémiai fény színe (kék, kék, borosztály stb.) és érzékelési sáv (ChlA, ChlB) testreszabható

• Távoli infravörös fényforrás (opcionális): F méréshez₀hullámhossz 730 nm

·Oxigén mérési modul (opcionális): az algák oxigénkibocsátásának mérése

·Hőmérséklet-szabályozó (opcionális): TR 6000 hőmérséklet-szabályozó, hőmérséklet-szabályozó tartomány 5–60 °C, pontosság 0,1 °C

• Elektromágneses keverés (opcionális): a minta keveréséhez használható, hogy megakadályozza a minta lecsapódását, manuálisan szabályozható sebesség vagy szoftver automatikus vezérlése

• Kommunikációs csatlakozó: RS232/USB

FluorWin-tSzoftver: kísérleti tervek meghatározása vagy létrehozása, fényforrás-vezérlési beállítások, adatkimenetek, elemzési feldolgozás és grafikon megjelenítése

Tipikus alkalmazások:

1. Wang Qiang kutatói a Kínai Tudományos Akadémia Vízibiológiai Intézetének FL3500 klorofluorescenszor (FL6000 előtti modell) és a TL növényi hőfelszabadító rendszer segítségével bebizonyították, hogy a nitrát nyomás először befolyásolja a Synechocystis sp. PCC 6803 PSII receptor oldalát (Zhan X, et al, 2017). A fotoszintézis alapos mechanizmusának tanulmányozása gyakran megköveteli a két eszköz együttműködését.

2.A Kínai Tudományos Akadémia Xinjiang Ökológiai és Földrajzi Intézetének Pan Ruanjuang kutatója és tárgycsoportja az FL3500 klorofrifluorescenszor (FL6000 előtti modell) segítségével mélyreható vizsgálatokat végzett a környezetben lévő nehézfémek, sók, mérgező vegyületek, növényvédők, rovarirtó szerek, antibiotikumok és egyéb különböző káros anyagok algák toxicológiájáról. Az FL3500 egyedülálló, magas felbontású OJIP gyors fluorescencia-dinamikai mérés, QA-re-oxidációs dinamika és S állapotátalakítás segítségével átfogóan felfedik a különböző koncentrációk és feldolgozási idők által az algák fotoszintézis rendszerére okozott károk toxikus mechanizmusait és ökológiai hatásait. Jelenleg a Pan Hanging csoport több mint húsz magas szintű cikket publikált a nemzetközi SCI folyóiratokban és a hazai alapfolyóiratokban az FL3500 (FL6000 előtti modell) segítségével.

Származási hely: Csehország

Referenciák:

1. Manaa A. és társai. 2019. A kinoa sótartalmú toleranciája (Chenopodium kinoaWilld) a kloroplast ultraszerkezete és a fotoszintetikus teljesítmény alapján. Környezeti és kísérleti botanika 162: 103-114

2. Yu Z. és társai. 2019. A Chlamydomonas reinhardtii érzékenysége a kadmium-stresszre a fototaxishoz kapcsolódik. Környezettudomány: folyamatok és hatások 21: 1011-1020

3. Liang Y. és társai. 2019. A tengeri diatomák hőmérsékleti akklimaciójának és alkalmazkodásának molekuláris mechanizmusai. Az ISME folyóirat, DOI: 10.1038/s41396-019-0441-9

4. Orfanidis S. és társai. 2019. Megoldása Nuisance Cyanobacteria Eutrophication biotechnológia révén. Alkalmazott tudományok 9(12): 2566

5. Sicora C I, et al. 2019. PSII funkció szabályozásaCyanothece-tsp. ATCC 51142 fény-sötét ciklus alatt. Fotoszintézis Kutatás 139(1–3): 461–473

6. Smythers A L, et al. 2019. A Poost hatásának jellemzőjeChlorella vulgaris-féléknem célszervezet. Kemoszféra 219: 704-712

7. Albanese P. és társai. 2018. Tilakoid proteom moduláció a különböző sugárzással termesztett borsónövényekben: kvantitatív proteomikus profilozás nemtranskriptomikus adatintegráció segítségével készült modellszervezet. The Plant Journal 96(4): 786-800

8. Antal T, Konyukhov I, Volgusheva A és társai. 2018. Klorofil fluoreszcencia indukciós és relaxációs rendszer a fotobioreaktorok fotoszintézis kapacitásának folyamatos ellenőrzésére. A Physiol Plantarum. DOI: 10.1111/ppl.12693

9. Antal T K, Maslakov A, Yakovleva O V, et al. 2018.A klorofill fluoreszencia növekedésének és romlásának kinetikájának, valamint a P700-hoz kapcsolódó absorbancia változásainak szimulációja szabályalapú kinetikai Monte-Carlo módszerrel. Fotoszintézis Kutatás. DOI: 10.1007/s11120-018-0564-2

10.Biswas S, Eaton-Rye J J, és társai. 2018. A PsbY szükséges a II. fotorendszer fotokárosodásának megelőzéséhez egy PsbM-hiányos mutánsban.Szinechocisztissp. PCC 6803. Photosynthetica, 56(1), 200–209.

11.Bonisteel E M, és társai. 2018. A picocyanobacteria Photosystem II javításának sebességében a törzsspecifikus különbségek az FtsH fehérjeszint és az izoforma expressziós minták különbségeivel korrelálnak. PLoS ONE 13(12): e0209115.

12.Fang X és társai. 2018. A tengeri cianobaktériumok transzkriptómiai válaszaiProchlorococcusvirális lízis termékek. Környezeti mikrobiológia, doi: 10.1101/394122.

13.Kuthanová Trsková E, Belgio E, Yeates A M és társai. 2018. Az antenna proton érzékenysége meghatározza a fotoszintetikus fénygyűjtési stratégiát, Journal of Experimental Botany 69(18): 4483-4493